viernes, 22 de febrero de 2008

Lavado de Material de Laboratorio

LAVADO DE MATERIAL DE HEMATOLOGIA


LAMINAS PORTAOBJETOS NUEVAS:

Lavar con agua caliente
Enjuagar con agua destilada
Colocar en alcohol Isopropilico o Etílico de 70% (Alcohol Industrial)por media hora como mínimo.
Secar con un paño que no suelte mota. Se recomienda la tela de pañal.




LAMINAS PORTAOBJETOS USADAS:

Colocar las láminas en un recipiente con Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
Descartar el agua. Cepillar con Jabón** y agua caliente.
Enjuagar muy bien con agua de chorro o de la llave.
Colocarlas en Alcohol de 70% por media hora como minimo
Secar con un paño que no suelte mota. Se recomienda la tela de pañal.


** El Jabón debe ser líquido y con un pH neutro. No se recomienda el jabón en polvo.

Para las láminas de las secciones de Microbiología-Orinas y Coprológicos se recomienda seguir las mismas instrucciones. Recuerde que cada sección debe lavar las láminas por separado.

PIPETAS HEMATOLÓGICAS( SAHLI- ROJOS-BLANCOS):

Sumergirlas en agua con Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos como mínimo
Enjuagar con abundante agua de la llave
Secar a temperatura no mayor de 37 º C. El calentamiento causa
desca libración de la pipetas
Usar Acetona en casos de Urgencia para secar el material rápidamente.
5. Las pipetas con coágulos se tratan con Hidróxido de Potasio al 10% ó
Peróxido de Hidrógeno por un tiempo de 12 horas






TUBOS DE WINTROBE:

Desocupar el tubo de wintrobe con ayuda de la aguja de Paster. Sumergir el tubo en una solución de Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
Lavar con abundante agua de chorro utilizando la aguja y jeringa para que quede mejor
Secar en el horno a una temperatura no mayor de 37 º C
Utilizar Acetona para secarlos en casos de urgencia


TUBOS PARA PRUEBAS DE COAGULACIÓN:

El material debe lavarse y guardarse por separado
Sumergir los tubos en un recipiente con Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
Lavar con detergente biodegradable neutro al 2% ó Líquido al 5%
Enjuagar con abundante agua de chorro
Lavar dos o tres veces con Agua destilada


CAMARA DE NEUBAUER:

Lavar con un solución de agua jabonosa +hipoclorito de sodio
Enjuagar con agua de chorro
Enjuagar con agua destilada
Secar con trapo que no suelte motas






















LAVADO DE MATERIAL PARA QUÍMICA SANGUÍNEA


TUBOS DE ENSAYO:

1. Desechar los coágulos en un recipiente que contenga agua
+ Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
2. Sumergir los tubos en una solución de Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
3. Descartar el agua residual y lavar los tubos con jabón **. Ayúdese de un churrusco
4. Enjuagar con abundante agua de chorro
5. Enjuagar con agua destilada
6. Seque los tubos en el horno ó boca abajo en una canastilla


** El Jabón debe ser líquido y con un pH neutro. No se recomienda el jabón en polvo.


CONTROL DE LIMPIEZA:

1. Colocar 1ml de agua destilada en un tubo de ensayo
2. agitar fuertemente
3. Agregar 2 gotas de Bromo sulftaleína

La aparición de un color púrpura o rosado en el agua indica alcalinidad por residuos de detergentes.

PIPETAS:

1. Colocarlas en un solución de Hipoclorito de sodio en posición vertical con la punta hacia abajo por 30 minutos
2. Poner en el fondo del recipiente una esponja o espuma para evitar ruptura
3. Lavar con jabón **
4. Enjuagar con abundante agua de chorro
5. Enjuagar con agua destilada
Nota:
Las pipetas con coágulos se deben sumergir en una solución de Hidróxido de potasio al 10% (KOH ) por 12 horas. Enjuagar con abundante agua de chorro y continuar con el lavado de rutina.




PUNTAS PLASTICAS:

Eliminación residuos proteicos:

1. Enjuagar con HCL 1% y luego con NaOH 1%
2. Lavar con agua y jabón**
3. Lavar con agua destilada
4. Secar a 37º C





LAVADO DE MATERIAL DE HEMATOLOGIA


LAMINAS PORTAOBJETOS NUEVAS:

Lavar con agua caliente
Enjuagar con agua destilada
Colocar en alcohol Isopropilico o Etílico de 70% (Alcohol Industrial)por media hora como mínimo.
Secar con un paño que no suelte mota. Se recomienda la tela de pañal.




LAMINAS PORTAOBJETOS USADAS:

Colocar las láminas en un recipiente con Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
Descartar el agua. Cepillar con Jabón** y agua caliente.
Enjuagar muy bien con agua de chorro o de la llave.
Colocarlas en Alcohol de 70% por media hora como minimo
Secar con un paño que no suelte mota. Se recomienda la tela de pañal.


** El Jabón debe ser líquido y con un pH neutro. No se recomienda el jabón en polvo.

Para las láminas de las secciones de Microbiología-Orinas y Coprológicos se recomienda seguir las mismas instrucciones. Recuerde que cada sección debe lavar las láminas por separado.

PIPETAS HEMATOLÓGICAS( SAHLI- ROJOS-BLANCOS):

Sumergirlas en agua con Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos como mínimo
Enjuagar con abundante agua de la llave
Secar a temperatura no mayor de 37 º C. El calentamiento causa
desca libración de la pipetas
Usar Acetona en casos de Urgencia para secar el material rápidamente.
5. Las pipetas con coágulos se tratan con Hidróxido de Potasio al 10% ó
Peróxido de Hidrógeno por un tiempo de 12 horas






TUBOS DE WINTROBE:

Desocupar el tubo de wintrobe con ayuda de la aguja de Paster. Sumergir el tubo en una solución de Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
Lavar con abundante agua de chorro utilizando la aguja y jeringa para que quede mejor
Secar en el horno a una temperatura no mayor de 37 º C
Utilizar Acetona para secarlos en casos de urgencia


TUBOS PARA PRUEBAS DE COAGULACIÓN:

El material debe lavarse y guardarse por separado
Sumergir los tubos en un recipiente con Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
Lavar con detergente biodegradable neutro al 2% ó Líquido al 5%
Enjuagar con abundante agua de chorro
Lavar dos o tres veces con Agua destilada


CAMARA DE NEUBAUER:

Lavar con un solución de agua jabonosa +hipoclorito de sodio
Enjuagar con agua de chorro
Enjuagar con agua destilada
Secar con trapo que no suelte motas






















LAVADO DE MATERIAL PARA QUÍMICA SANGUÍNEA


TUBOS DE ENSAYO:

1. Desechar los coágulos en un recipiente que contenga agua
+ Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
2. Sumergir los tubos en una solución de Hipoclorito de sodio al 13% por 30 minutos
3. Descartar el agua residual y lavar los tubos con jabón **. Ayúdese de un churrusco
4. Enjuagar con abundante agua de chorro
5. Enjuagar con agua destilada
6. Seque los tubos en el horno ó boca abajo en una canastilla


** El Jabón debe ser líquido y con un pH neutro. No se recomienda el jabón en polvo.


CONTROL DE LIMPIEZA:

1. Colocar 1ml de agua destilada en un tubo de ensayo
2. agitar fuertemente
3. Agregar 2 gotas de Bromo sulftaleína

La aparición de un color púrpura o rosado en el agua indica alcalinidad por residuos de detergentes.

PIPETAS:

1. Colocarlas en un solución de Hipoclorito de sodio en posición vertical con la punta hacia abajo por 30 minutos
2. Poner en el fondo del recipiente una esponja o espuma para evitar ruptura
3. Lavar con jabón **
4. Enjuagar con abundante agua de chorro
5. Enjuagar con agua destilada
Nota:
Las pipetas con coágulos se deben sumergir en una solución de Hidróxido de potasio al 10% (KOH ) por 12 horas. Enjuagar con abundante agua de chorro y continuar con el lavado de rutina.




PUNTAS PLASTICAS:

Eliminación residuos proteicos:

1. Enjuagar con HCL 1% y luego con NaOH 1%
2. Lavar con agua y jabón**
3. Lavar con agua destilada
4. Secar a 37º C